免疫親和柱采用高特異性的單克隆抗體，能夠簡單高效的分離和純化食品和飼料中的霉菌毒素，同時具有高滲透性、無需附加壓力、低損耗等特點。測定的基礎是抗原抗體反應，抗體連接在柱體內，樣品經過提取、稀釋，緩慢的通過親和柱，在柱內河豚的毒素與抗體結合，之后洗滌除去沒有被結合的其他無關物質。用洗脫液洗脫河豚的毒素，然后注入到分析儀器中用于檢測。

    免疫親和柱的特點：

    1、采用單克隆免疫技術，可以有效性地將待測成分分離出來，分離效率和回收率高，正確性和可靠性強

    2、實驗穩定性好，重復性強。

    3、純化過程簡單快速，短時間即可處理大量樣品

    4、實驗設備輕便，自動化程度高，操作簡單，對實驗人員要求不高，可在小型試驗場所使用。

    5、無需有毒溶劑，實驗過程安全可靠。

    6、應用范圍廣，可處理多種復雜樣品。

     免疫親和柱的操作流程：

    ①提取：參照GB5009.118-2016中各法，對樣品進行處理。

    ②凈化：以GB5009.118-2016為例說明

    （1）柱子預處理：取出親和柱，恢復至室溫，將上端塞子取出，打開下端堵頭，將柱內保存液流掉至高于凝膠上界面3-5mm處，停止流液。

    （2）加樣：加入處理好的提取濾液，打開下端堵頭，調節流速至1滴/秒，直至空氣進入親和柱中，棄去流出液。

    （3）淋洗：液體*排凈后，用蒸餾水，淋洗，流速為1-2滴/秒，棄掉流出液，抽干。

    （4）洗脫：加入甲醇（色譜級），調節流速為1滴/秒，緩慢洗脫，收集全部洗脫液，用甲醇（色譜級）定容至（即為凈化后的樣品）。

    （5）衍生：將凈化后樣品在50℃下用氮氣吹干，加入二甲基氨基吡啶溶液和蒽腈溶液，在渦旋混合器上混勻，50℃反應，在冰水中冷卻后取出，50℃氮氣吹干，用流動相溶解，待檢測。

    ③檢測

    凈化后樣品可直接用HPLC（高效液相色譜法）、GC-MS（氣相色譜-質譜聯用儀）、ELISA（酶聯免疫吸附法）等方法進行檢測。